DAPT是γ分泌酶抑制剂
DAPT (GSI-IX) 是一种有效的,口服活性的 γ 分泌酶 (γ-secretase) 抑制剂,对总 amyloid-β (Aβ) 和 Aβ42 的 IC50 分别为 115 nM 和 200 nM。DAPT 抑制 Notch 1 信号传导并诱导细胞分化。DAPT 还可诱导细胞自噬 (autophagy) 和凋亡 (apoptosis)。DAPT 具有神经保护活性,并可用于自身免疫性和淋巴增生性疾病,退化性疾病和癌症的研究。
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DAPT抑制剂生物活性
体外研究
DAPT 抑制 Aβ 的产生超过 90%,仅适度降低培养基中的 APPβ。尽管 DAPT 处理后 APPβ 减少了约 30%,但这种作用不依赖于浓度,并且可以通过去除 DAPT 来逆转
DAPT 的浓度 (0、25、50 和 75 μM) 和 γ-分泌酶产生的 Notch 1 片段 Val1744-NICD 在 48 小时后以剂量依赖性方式降低 (P <0.01)。在 50 μM 浓度下,γ-分泌酶的激活几乎完全被 DAPT 抑制
体内研究
将 DAPT 施用于 PDAPP 小鼠 (100 mg/kg sc),并检查大脑皮层中的 DAPT 和 Aβ 水平。处理后 3 小时大脑中达到 490 ng/g 的峰值 DAPT 水平,并且在前 18 小时内持续超过 100 ng/g (——200 nM) 的水平。这些 DAPT 的脑浓度超过了其降低神经元培养物中 Aβ 的 IC50 (115 nM),并产生了稳健和持续的药效学效应
DAPT 通过下调大鼠Notch 1和核因子kappa B的表达来保护大脑免受脑缺血。Western blot 分析还显示,DAPT (0.03 mg/kg) 组 Notch 1 和 NF-κB 表达显著降低 (P<0.05 vs. MCAO 组) 相关产品推荐:蛋白酶体抑制剂MG-132作用原理
实验参考方法
细胞测定
人胚肾细胞(HEK 293),转染了APP751基因,用于常规的Aβ减少测试。细胞在96孔板中铺板,并在补充10%热灭活胎牛血清的杜培氏修饰鹰培养基(DMEM)中过夜附着。细胞在37°C下用DAPT(0,0.4,2,10,50和250 nM)预处理2小时,然后吸去培养基,施加新鲜的化合物溶液。在额外的2小时处理期后,抽取条件培养基并通过针对总Aβ的夹心ELISA(266-3D6)进行分析。Aβ生成的减少相对于用0.1% DMSO处理的对照细胞进行测量,并以抑制率的百分比表示。来自至少六个剂量的重复数据使用XLfit软件拟合到四参数逻辑模型,以确定效力。
MCE尚未独立确认这些方法的准确性。仅供参考。
动物给药
小鼠
三至四个月大的杂合PDAPP转基因小鼠过表达淀粉样前体蛋白(APPV717F)突变形式。每个治疗组(n=10)由相同数量的年龄匹配雄性和雌性动物组成,这些动物在治疗前禁食过夜。治疗组和对照组均以10 mL/kg的体积给予DAPT或仅给予载体。处理组织并进行所有Aβ和APP测量。取出大脑后,单侧皮层被匀浆、离心,超natant用于Aβ测量。另一侧的皮层则快速冷冻以分析化合物水平。Aβ水平以湿组织重量的ng/g表示,百分比减少相对于载体处理对照动物的平均Aβ水平计算。数据使用Mann-Whitney非参数统计分析以评估显著性。
大鼠[3]
使用雄性斯普拉格-道利大鼠(260-290克)。DAPT溶液在缺血再灌注手术(MCAO)后立即立体定位注射入侧脑室(LV)。对LVs的立体定位注射是在距离bregma -0.8 mm (前后),±1.5 mm (内外) 和−4.5 mm (上下) 的坐标下进行。30只大鼠随机分为三个操作组(每组10只):假手术组,接受等体积PBS而不进行MCAO;MCAO组,在MCAO后接受等量PBS;DAPT组,在MCAO后接受0.03 mg/kg DAPT。术后24小时评估第一次神经功能,48小时后评估第二次神经功能。同时,测量并比较不同组之间的大脑水分含量和梗死体积。
MCE尚未独立确认这些方法的准确性。仅供参考。