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Andrographolide穿心莲内酯

  Andrographolide 是一种 NF-κB 抑制剂,通过共价修饰内皮细胞中 p50 的半胱氨酸残基而抑制 NF-κB 活化,而不影响 IκBα 降解或 p50/p65 核易位。Andrographolide 具有抗病毒作用。
 
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  生物活性
 
  体外研究
 
  Andrographolide(AP)以浓度依赖的方式抑制受体活化因子核因子κB配体(RANKL)介导的破骨细胞分化和骨吸收,并减少破骨细胞特异性标记物的表达。Andrographolide通过对p50的还原Cys62进行共价修饰,抑制TNFα诱导的NF-κB激活,从而减轻炎症,而不影响IκBα降解或p50/p65的核转运。Andrographolide还在不影响p38或JNK信号通路的情况下抑制ERK/MAPK信号通路。Andrographolide以浓度依赖的方式抑制RAW 264.7细胞的破骨细胞分化。在BMMs和RAW 264.7细胞中,Andrographolide以浓度依赖的方式抑制破骨细胞形成,且没有明显的细胞毒性作用。Andrographolide处理显著减少了骨吸收的面积。经过2.5μM Andrographolide处理后,观察到的骨吸收仅为对照组的约30%。经过10μM Andrographolide处理后,破骨细胞的骨吸收几乎被完全抑制[1]。
 
  体内研究
 
  用Andrographolide(5或30 mg/kg)处理可减少LPS诱导的骨丧失程度。此外,与LPS处理相比,Andrographolide略微增加了骨矿密度(BMD)和皮质厚度。组织学检查证实了Andrographolide对LPS诱导的骨丧失的保护作用。LPS注射导致炎症性骨侵蚀和TRAP阳性破骨细胞数量增加[1]。
 
  MCE尚未独立确认这些方法的准确性。以上内容仅供参考。
 
  实验参考方法
 
  激酶测定[1]
 
  体外破骨细胞生成实验用于研究穿心莲内酯对破骨细胞分化的影响。首先准备骨髓巨噬细胞(BMM)。简而言之,从6周龄的C57/BL6小鼠的股骨和胫骨中提取细胞,并在含有完整细胞培养基和30 ng/mL M-CSF的T-75 cm²培养瓶中孵育以进行增殖。当更换培养基时,细胞会被冲洗,以去除残余的间质细胞。在细胞达到90%汇合度后,用PBS洗涤三次,并用胰蛋白酶消化30分钟以收获BMM。附着在培养皿底部的细胞被归类为BMM;这些BMM以每孔8×10³个细胞的密度在96孔板中平板培养,分三组进行,并在37°C、5% CO2的湿润培养箱中孵育24小时。然后将细胞处理不同浓度的穿心莲内酯(0、2.5、5或10 μM)及M-CSF(30 ng/mL)和RANKL(50 ng/mL)。经5天后,对细胞进行固定并染色以检测抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)活性。计数具有五个以上核的TRAP阳性多核细胞作为破骨细胞[1]。
 
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  细胞测定[1]
 
  穿心莲内酯对细胞增殖的影响通过CCK-8法确定。BMM以每孔3×10³个细胞的密度在96孔板中平板培养,分三组进行。24小时后,细胞用增加浓度的穿心莲内酯(0、2.5、5、10或20 μM)处理2天。接下来,向每孔添加10 μL CCK-8,然后在37°C下再孵育2小时。然后使用ELX800吸光度微孔读数器在450 nm波长(650 nm参考)下测量光密度(OD)。计算细胞活力[1]。
 
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  动物给药[1]
 
  小鼠[1]
 
  C57BL/6小鼠(8周龄)分为四组,每组七只小鼠。小鼠在注射LPS(5 μg/g体重)前1天腹腔注射穿心莲内酯(5或30 mg/kg体重)或PBS作为对照。穿心莲内酯或PBS每隔一天腹腔注射一次,持续8天。LPS在第一天和第四天腹腔注射。所有小鼠在初始LPS注射后8天被处死,所有动物的左侧股骨用高分辨率微CT扫描,分辨率为9 μm。
 
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  参考文献
 
  [1]. Zhai ZJ, et al. Andrographolide suppresses RANKL-induced osteoclastogenesis in vitro and prevents inflammatory bone loss in vivo. Br J Pharmacol. 2014 Feb;171(3):663-75.
 
  [2]. Gupta S, et al. Broad-spectrum antiviral properties of andrographolide. Arch Virol. 2017 Mar;162(3):611-623.

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