BX795是选择性的 PDK1抑制剂
BX795是有效,选择性的 PDK1 抑制剂,IC50为6 nM, 比PKA,PKC,c-Kit,GSK3β的选择性高50多倍。BX795
MCE 的所有产品仅用作科学研究,我们不为任何个人用途提供产品和服务
BX795生物活性
体外
BX795有效阻断PC-3细胞中的PDK1活性,如其阻断S6K1,Akt,PKCδ和GSK3β磷酸化的能力所示。BX795有效抑制肿瘤细胞在塑料上的生长,对于MDA-468,HCT-116和MiaPaca细胞,IC50分别为1.6,1.4和1.9μM。在软琼脂中,BX795显示出更高的生长抑制,IC50为0.72,MDA-468和PC-3细胞分别为0.25μM。此外,BX795作为TBK1 /IKKε的抑制剂,阻断TBK1-和IKKε介导的IRF3活化和IFN-β的产生。在血小板生理反应中,BX795对2-MeSADP诱导的或胶原诱导的聚集,ATP分泌和血栓素生成产生抑制作用
BX795的实验参考方法
激酶测定
在直接激酶测定和测量PDK1-和PtdIns-3,4-P2介导的AKT2活化的偶联测定形式中测定PDK1。对于偶联测定,最终测定混合物(60μL)含有:15mM MOPS,pH 7.2,1mg / mL牛血清白蛋白,18mMβ-甘油磷酸酯,0.7mM二硫苏糖醇,3mM EGTA,10mM MgOAc,7.5。 μMATP,0.2μCi[γ-33P] ATP,7.5μM生物素化肽底物(生物素-ARRRDGGGAQPFRPRAATF),0.5μL含PtdIns-3,4-P2的磷脂囊泡,60μg纯化的重组人PDK1和172 ng 纯化的重组人AKT2。 在室温下温育2小时后,在链霉抗生物素蛋白包被的SPA珠上从10μL测定混合物中捕获生物素标记的肽,并通过Wallac MicroBeta计数器中的闪烁接近来测量产物形成。 形成的产物与孵育时间和加入的PDK1和非活性AKT2的量成比例。 PDK1以次优水平添加,使得该测定可灵敏地检测AKT2活化的抑制剂以及PDK1或AKT2的直接抑制剂。 为了直接测量PDK1活性,最终的测定混合物(60μL)含有50mM Tris-HCl,pH 7.5,0.1mM EGTA,0.1mM EDTA,0.1%β-巯基乙醇,1mg / mL牛血清白蛋白,10mM MgOAc, 10μMATP,0.2μCi[γ-33P] ATP,7.5μM底物肽(H2N-ARRRGVTTKTFCGT)和60ng纯化的重组人PDK1。 在室温下4小时后,加入25mM EDTA并在Whatman P81磷酸纤维素纸上点样一部分反应混合物。 滤纸用0.75%磷酸洗涤三次,用丙酮洗涤一次。干燥后,使用Fuji磷光成像仪定量过滤器结合的标记肽。
细胞分析
将以低密度接种的细胞(1,500-3,000个细胞/孔,0.1mL /孔,96孔板)孵育过夜。 通过在1%二甲基亚砜和生长培养基(二甲基亚砜的最终浓度,0.1%)中加入10μL/孔的化合物,然后短暂摇动来制备化合物处理。将处理过的细胞培养72小时,并通过加入10μL代谢染料WST-1测量活力。 在平板读数器中在450nm处读取WST-1信号,并减去无细胞或零时间背景,以计算净信号。 结果报告为平均值±S.E。 两次或更多次重复。
MCE尚未独立确认这些方法的准确性。 它们仅供参考。
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BX795生物活性
体外
BX795有效阻断PC-3细胞中的PDK1活性,如其阻断S6K1,Akt,PKCδ和GSK3β磷酸化的能力所示。BX795有效抑制肿瘤细胞在塑料上的生长,对于MDA-468,HCT-116和MiaPaca细胞,IC50分别为1.6,1.4和1.9μM。在软琼脂中,BX795显示出更高的生长抑制,IC50为0.72,MDA-468和PC-3细胞分别为0.25μM。此外,BX795作为TBK1 /IKKε的抑制剂,阻断TBK1-和IKKε介导的IRF3活化和IFN-β的产生。在血小板生理反应中,BX795对2-MeSADP诱导的或胶原诱导的聚集,ATP分泌和血栓素生成产生抑制作用
BX795的实验参考方法
激酶测定
在直接激酶测定和测量PDK1-和PtdIns-3,4-P2介导的AKT2活化的偶联测定形式中测定PDK1。对于偶联测定,最终测定混合物(60μL)含有:15mM MOPS,pH 7.2,1mg / mL牛血清白蛋白,18mMβ-甘油磷酸酯,0.7mM二硫苏糖醇,3mM EGTA,10mM MgOAc,7.5。 μMATP,0.2μCi[γ-33P] ATP,7.5μM生物素化肽底物(生物素-ARRRDGGGAQPFRPRAATF),0.5μL含PtdIns-3,4-P2的磷脂囊泡,60μg纯化的重组人PDK1和172 ng 纯化的重组人AKT2。 在室温下温育2小时后,在链霉抗生物素蛋白包被的SPA珠上从10μL测定混合物中捕获生物素标记的肽,并通过Wallac MicroBeta计数器中的闪烁接近来测量产物形成。 形成的产物与孵育时间和加入的PDK1和非活性AKT2的量成比例。 PDK1以次优水平添加,使得该测定可灵敏地检测AKT2活化的抑制剂以及PDK1或AKT2的直接抑制剂。 为了直接测量PDK1活性,最终的测定混合物(60μL)含有50mM Tris-HCl,pH 7.5,0.1mM EGTA,0.1mM EDTA,0.1%β-巯基乙醇,1mg / mL牛血清白蛋白,10mM MgOAc, 10μMATP,0.2μCi[γ-33P] ATP,7.5μM底物肽(H2N-ARRRGVTTKTFCGT)和60ng纯化的重组人PDK1。 在室温下4小时后,加入25mM EDTA并在Whatman P81磷酸纤维素纸上点样一部分反应混合物。 滤纸用0.75%磷酸洗涤三次,用丙酮洗涤一次。干燥后,使用Fuji磷光成像仪定量过滤器结合的标记肽。
细胞分析
将以低密度接种的细胞(1,500-3,000个细胞/孔,0.1mL /孔,96孔板)孵育过夜。 通过在1%二甲基亚砜和生长培养基(二甲基亚砜的最终浓度,0.1%)中加入10μL/孔的化合物,然后短暂摇动来制备化合物处理。将处理过的细胞培养72小时,并通过加入10μL代谢染料WST-1测量活力。 在平板读数器中在450nm处读取WST-1信号,并减去无细胞或零时间背景,以计算净信号。 结果报告为平均值±S.E。 两次或更多次重复。
MCE尚未独立确认这些方法的准确性。 它们仅供参考。